- Podemos observar los reticulocitos a través del microscopio , utilizando la tinción de colorantes vitales ( azul de metileno nuevo o azul cresil brillante , este último es el que utilizamos nosotros ) .
- Estos colorantes tiñen los restos de ARN ( ácido ribonucleico) , que lo entiendo como restos de material genético.
- Los hilos o fibras teñidos de azul , se presentarán como un conjunto de hilos o fibras que, dependiendo del grado de madurez del eritrocito , será mas compacto ( forma de oviilo ) , cuando la célula aún es joven ( grado I ) .
- Ese ovillo ira decreciendo conforme va madurando o envejeciendo la célula.
- Hasta que ya no tenga nada de ARN , que será en el final del ( grado IV) .
- El proceso de maduración va del grado I , al IV de forma continuada .
Material necesario
- Microscopio
- Tubos de hemólisis
- Pipetas pasteur
- Portas
- Baño de agua
- Embudo y papel de filtro
Reactivos
- Azul cresil brillante en polvo
- Solución salina al 0,9 %
- Citrato sódico al 3 % ( 3 gr en 100 ml )
- Agua destilada
- Aceite de inmersión
Muestra
- Sangre anticoagulada con EDTA .
- Porque los reticulocitos también maduran in vitro .
- Técnica
- Preparación del colorante :
- Mezclamos 80 ml de solución salina y 20 ml de citrato sódico al 3 %
- Pesamos un gramo de azul de cresil brillante y lo disolvemos en la mezcla anterior ( azul de metileno )
- Filtramos antes de usarlo
- Tinción de los reticulocitos
- Es una tinción supravital , se hace mientras las células aún estan vivas
- Para ello echamos 3 gotas de la solución colorante ( sin alterar ) en un tubo de hemólisis y otras 3 gotas de sangre total previamente homogeneizada
- mezclamos suavemente con papel parafilm e introducimos en el baño de agua a 37ºC durante 5min
- Pasado este tiempo volvemos a homogeneizar y tomamos una gota de la suspensión para depositarla en un porta
- Por último hacemos una extensión o frotis y dejamos secar para verla posteriormente con aceite de inmersión , y como no esta fijada se utiliza un cubre .
- Observamos la muestra con el objetivo de 100 ( inmersión )
- Los hematíes se habrán teñido de un color verde amarillento y los reticulocitos presentaran unas fibras azules en su interior
- Se deben hacer dos extensiones para hacer el recuento de las dos y para que sea válido la diferencia entre ambas tiene que ser menor de 5 reticulocitos .
- El resultado final es la media de ambos.
Interpretación clínica de los resultados obtenidos ( fórmulas )
nº de reticulocitos contados
- % de reticulocitos = ------------------------ x 100
nº de hematíes contados
- Se compensa la falta de glóbulos rojos o hematíes , aumentando el nº de reticulocitos
- En adultos y niños los valores normales están entre 0,5% y 1,5%
+++++++++++++ 0,5% y 1,5%+++++++++++++
HTC.paciente
- % de reticulocitos corregido = % de reticulocitos X -----------------------
HCT. normal
- Las anemias intensas alteran los valores normales aumentendo el nº de reticulocitos
% de reticulocitos corregido
- IPR = ---------------------------------------
días de maduración en sangre periférica
- IPR ----- ALTO = ES UN VALOR POR ENCIMA DE LO NORMAL (3) INDICA ALTA ACTIVIDAD HEMATOPOYÉTICA QUE DE COSTUMBRE
- IPR--------BAJO = MENOS DE 2, INDICA UNA ESCASA ACTIVIDAD ERITROPOYÉTICA ,MENOS QUE DE COSTUMBRE
Hoja de trabajo
- ¿ Qué son los reticulocitos ?-
- ¿ Qué tipo de tinción estamos utilizando ?
- ¿Por qué hacemos la técnica de corrección de reticulocitos ?
- ¿ Qué nos expresa el IPR ?
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